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원유검사-체세포수 검사

   젖소의 유방내로 병원성미생물이 침입하여 감염되면 유선조직의 염증상태로 인 하여 원유중에는 '체세포수'가 증가하게 된다. 이에 따라 체세포수를 측정하므로 서 유방염을 진단하는 기술은 전 세계적으로 가장 널리 이용되고 있다. 선진낙농 국가에서는 오래전부터 체세포수에 의한 유방염진단 및 등급제를 실시하고 있어 우유의 위생적인 측면에 높은 관심을 기울이고 있는 실정이다.
   체세포수를 측정하는 방법으로는 직접염색에 의한 현미경적 검사법, 우유의 점 도를 이용하여 측정하는 Rolling Ball Viscometer(RBV)법, 체세포를 형광 물질인 에티디움 브로마이드(Ethidium bromide)로 염색시켜 계수하는 포소 매틱(Fossomatic) 및 소마카운터(Somacount), 코브라(Cobra)법이 있다.

체세포(Somatic Cell)란?

   우유중에 존재차는 체세포의 종류는 매우 다양하나 일반적으로 상피세포 (Epithelial Cell), 중성구(Neutrophils), 임파구(Lymphocytes), 단핵구 (Monocytes)와 그외의 세포 등을 들 수 있다. 건강한 유선으로 부터 분비되는 우유중엔 60∼70% 정도가 상피조직이지만 유방에 손상을 받게되면 중성구의 숫 자가 전체 세포수의 90∼95% 정도를 차지할 만큼 급증하게 된다. 따라서 체세 포수의 측정은 유선의 염증상태를 알아내는데 중요한 역할을 한다.

체세포 수 측정법

  • 직접현미경 검사법

    슬라이드 글라스의 1㎠내에 샘플우유 0.01ml를 도말, 건조시켜 염색후 현미 경하에 체세포수를 직접 검사하고 현미경계수를 곱하여 원유 1ml중 체세포수를 산정한다. 많은 시간과 노력이 들어서 다수의 샘플을 처리하기에는 부적합하다.

    • 원유채취 및 보존
      • 원유 채취시에는 충분히 혼합한 후 채취하고 저장 온도가 6℃를 초과해서는 안되며 6시간 이내에 검사를 수행하여야 한다 Orthoboric acid (0.6%이내) 를 보존제로 첨가시에는 6℃에서 24시간 보존할 수 있다. 체세포수는 보존기간 이 길면 감소하며, 특히 처음 1∼2일 동안에 많이 감소되고, 2∼3일 이후의 체 세포수 검사는 신빙성이 없다.
    • 염색액 (Newman-Lampers stain solution)
      • Methylene blue 0.6g Ethyl alcohol 95% 54ml Tetrachlorethane 40ml Glacial acetic acid 6ml Ethyl alcohol과 Tetrachlorethane을 홉합하여 60∼70℃ 항온수조에서 처리한 후 methylene blue를 주의 깊게 가한다. 4℃로 식힌후 glacial acetic acid를 가하여 10∼12 micron 이하의 구멍 사이즈(pore size)의 필 터(filter)를 이용하여 여과한 다음 사용한다.
    • 염색 방법
      • 슬라이드 글라스는 사전에 깨끗이 닦고, 알코올로 재처리후 건조시켜 사용하 며, 슬라이드 글라스위의 1㎠ 격자는 메니큐어 등으로 정확히 표시한다. 원유 를 30∼40℃로 열처리한 후 슬라이드위(1㎠)에 고르게 도말하여 고정시키고, 10분간 염색을 실시하고 증류수로 3회 수세후 건조시켜 현미경으로 관찰한다.
    • 체세포수 산정
      • 현미경계수 (Microscopic factor:MF)
        MF   =   100(우유희석배수) × 100(mm2을 cm2로 환산)
        r2(반지름) × 3.1416
          =   10,000    =   500,000
        0.082 × 3.1416

        (한시야 면적은 r²×3.1416 이며, 1㎠를 현미경시야 면적으로 나누면 1㎠ 내의 현미경시야수가 되며, 이 수치에 우유희석배수를 곱하면 1ml 우유중의 현 미경계수츨 구할 수 있음)
        체세포수 측정시 핵을 가진 모든 세포를 계산하고 핵이 없는 원형질 (cytoplasmic) 덩어리 및 작은 핵을 가진 작은 세포의 분해물(small cell fragment)은 계산하지 않는다. 체세포수의 산정은 <표 2>에서와 같이 working factor 를 곱하여 산정한다. 예를 들면 50시야를 임의로 측정했을 때 체세포수가 30이었다면 우유 1ml중의 체세포수는 working factor (10,000) × 측정수 (30) = 300,000 이 된다.

      <표 2> 시야수와 working factor와의 관계

      측정한 시야수 Working factor
      1 500,000
      10 50,000
      25 20,000
      50 10,000
      100 5,000
      200 2,500

  • Rolling Ball Viscometer(RBV)법
    • 계면활성제의 작용으로 체세포중 길게 얽힌 DNA분자가 풀려나와 우유중의 단 백질과 결합함으로써 섬유성 기질을 형성시켜 점도를 나타내며, 점도정도를 세포 수로 한산하여 측정하는 방법이다. Glycerol 28%(w/w)로서 점도를 고정시킨 후 시험코자하는 우유샘플과 계면활성제(Viscol 610)를 섞어 이로인한 점도를 구슬(Ball)이 움직이면서 체세포수를 가리키는 점도측정 장치이다.
  • Fossomatic 및 Somacount 이용 측정법
    • 우유중 세포에 형광물질인 Ethidium bromide로 코팅시켜 일정량을 디스크 (disk)에 도포시켜 순간적으로 통과되는 체세포를 할로겐 램프로 측정하는 것이 포소매틱(Fossomatic)이며, 레이저 빔으로 체세포를 측정하는 장치가 소마카 운터 (Somacount) 이다. 가장 신속하게 우유중 체세포수를 측정할 수 있는 방법으로서 시간당 200개 이상의 샘플을 측정할 수 있다. 세계각국의 유방염 진단연구소나 유방염진단 서 비스 센터에서는 이미 오래전부터 이 장치를 설치 운용하고 있어 목장이나 각 유 처리장으로부터 의뢰된 집합유(Bulk milk)와 젖소 개체별 우유에 대한 검사를 하고 있다.
  • Cobra 법
    • Cobra는 direct epiflurorescence filteration technique 원리를 이용하는 방법으로, 이 방법은 원유의 미생물과 체세포를 막 여과(menbrane filtration)에 의해 농축하고 epifluorescence microscopy를 사용하여 관찰 하는 것이다. 이 시스템은 특별한 여과장치와 원통모양의 미세한 구멍의 polycarbonate membrane을 염색한 후 자동현미경으로 세균 및 체세포의 형상을 분석함으로써 화인하는 장치이다.

체세포 검사장비의 표준화

   체세포수 측정의 표준이 되는 검사법은 원유를 슬라이드에 직접 도말하여 검사 하는 직접현미경법이다. 그러나 이 방법은 각각의 원유를 사람이 직접 도말하고 염색하여 현미경으로 검사해야 하므로 번거로울뿐 아니라 많은 시간과 노력이 요 구되어서 등급별 유대를 지불하는 현행제도하에서 대량의 샘플을 검사하기에는 거의 불가능하며 비효율적이다. 따라서 현재 여러 낙농선진국가들에서는 표준용 액을 사용하여 직접현미경법을 기초로 보정을 한 자동화된 체세포 측정기기를 사 용하고 있는 실정이다. 이 기기들은 개발 당시의 조사결과 직접현미경법에 의한 체세포수와 비교했을때 95%이상의 상관관계가 있는 것으로 알려져 있기는 하 나, 현실적으고 여러가지 요인에 의해 변할 수 있기 때문에 체세포수 표준용액을 이용하여 정기적으로 이 기기들은 표준화해야 할 필요성이 있다.
   이러한 필요성에 따라 선진 외국에서는 표준용액으로서 원유가 아닌 화학물질 (chemical bead류)을 이용하거나 원유에 보존제(Bronopol, Pottasium dichromate, Sodium Azide 등)만을 첨가하여 만든 표준용액을 사용하기도 하는데 그 유효기간이 7∼14일 정도 밖에 되지 않아 자주 만들어 써야만 하는 단점이 있다. 그리하여 수의과학연구소에서는 장기간 보존이 가능하며 체세포수 측정기기에 활용될 수 있는 원유의 체세포수 측정용 표준용액을 제공하고자 광범 위한 연구를 실시한 결과, 원유중의 체세포를 특수하게 고정처리하고 특정의 보 존제를 첨가함으고써 상기 목적을 달성할 수 있었다. 즉 포르말린(formalin) 10%(V/V) 및 증류수 90%(V/V)로 이루어진 고정처리액을 원유중에서 최종농 도가 0.25∼0.4%되게 처리하여 체세포를 고정시켰으며, 티머로살(thimerosal, 1%) 5∼15ml, 디메틸설폭시드(DMSO) 10∼20ml, 글리세린(glycerin) 10∼20ml 및 겐타마이신(gentamycin, 80mg/ml) 0.5∼2ml로 이루어진 보 존제 용액을 약 3%(V/V) 이상 함유하는 원유중의 체세포수 측정용 표준용액을 제조하였다. 위와 같은 방법으로 개발한 체세포수 표준용액은 종래의 표준 용액 에 비해 유효기간이 길며<표 3>, 현재 체세포수 표준측정법인 직접현미경법과 혈 액중 백혈구수 검사시 널리 사용되고 있는 혈구계산판을 이용하여 검사할 수도 있어, 표준용액의 정확성을 향상시킬수 있을 뿐만 아니라 체세포수 측정기기에 활용될 수 있는 등 여러가지 장점이 있다. 따라서 이렇게 제조된 표준용액은 체 세포수 측정기기 표준화를 이루는데 매우 중요한 지침이 될 뿐아니라 원유의 품 질향상과 더불어 유대지불 일원화에도 막대한 기여를 할 수 있을 것으로 생각된 다.


<표 3> 체세포수 표준용액의 보관온도에 따른 안정성(보존성) 결과

구분 체세포수(×1,000)
검사전 7일 14일 24일 50일 60일 70일
실온(25℃) 302 306
(101.3)
306
(101.3)
241
(80.0)
N.T N.T N.T
702 699
(99.5)
682
(97.1)
519
(73.1)
N.T N.T N.T
실온(25℃) 302 304
(100.6)
302
(100)
299
(99.0)
295
(97.6)
301
(99.6)
289
(95.6)
702 707
(100.7)
704
(100.2)
700
(99.7)
680
(96.8)
691
(98.4)
703
(100.1)

* N.T : not test
** 결과 요약 : 보존성 시험결과 실온에서는 14일까지 안정성이 있고, 냉장보관상태에서는 70일 이상 안정성이 인정됨.

체세포수 측정장비 표준화 과정을 기술하면 다음과 같다. 먼저 제조된 표준용 액의 체세포수를 혈구계산법(Hematocytometer)과 직접현미경법으로 측정한 후 체세포수의 평균값과 표준편차를 구한뒤 표준편차가 5%이내에 있으면 이를 표준용액으로 사용하여 각 체세포 측정기기의 표준화 또는 보정(calibration) 을 실시한다. 기기별 보정 방법은 먼저 각 기기별로 영점을 확인한 다음 자동 보 정(automatic calibration) 프로그램에 들어가서 low, medium, high의 3 종의 표준용액을 40℃에서 5분간 가온한 후 체세포수를 측정하고 각 기기별 프 로그램에 맞게 보정을 실시하면 된다.
제조된 low, medium, high 3종의 표준용액에 대한 체세포 검사장비별 체 세포수를 측정한 결과치의 모든 검사 기기별 상관관계가 95%∼105% 이내인 값을 최종 체세포수 값으로 정한다<표 4>.


<표 4> 표준용액에 대한 체세포수 검사장비별 비교

측정방법 10회 평균 체세포수 (×1,000) 비고
Low Medium High
직접현미경법 216(98.1) 421(105) 633(105) 국립수의과학검역원
Cobra 216(98.1)
239(108)
381(95.2)
388(97.0)
570(95.0)
588(98.0)
춘천가축위생시험소
전남가축위생시험소
Foss 90
보정전(Gain:6.3, DL:3.05)
보정후(Gain:8.0, DL:2.0)

202(91.8)
219(99.5)

380(95.0)
407(101)

588(98.0)
600(100)
빙그레 도농집유장
Foss 300
(slope:1,000, Bias:0)
219(99.5) 411(102) 568(94.6) 국립수의과학검역원
Somacount
(0.736)
221(100) 396(99.0) 595(99.1) 국립수의과학검역원
최종 조정값 220(100) 400(100) 600(100)

최종 조정된 3종의 표준용액과 실제 원유검사 결과와의 상관관계를 조사하기 위하여 먼저 체세포 검사기기별로 표준화를 실시한 다음 냉각기 원유에 대한 체 세포수값을 비교 조사하였다 그 결과 원유 위생등급과 관련이 있는 20만에서 75 만 범위에서는 기기별로 대부분이 90∼110%의 상관성을 나타내었다(표 5). 표 준용액에 비하여 원유검사시의 편차가 약간 더 큰 이유는 원유 자체가 여러가지 조건에 따라 쉽게 변할 수 있기 때문에 동일 샘플간의 결과도 5% 정도의 편차를 나타낼 뿐 아니라 또한 검사 기기별로 측정원리가 달라서 어느정도 차이가 있을 수 있기 때문인 것으로 생각된다. 하지만 체세포수 등급, 즉 1등급 20만 미만, 2 등급 20∼40만, 3등급 40∼75만, 등외 75만 이상의 등급 결정에는 5% 미만의 낮은 영향을 미치는 것으로 나타나서 크게 문제가 되지 않는 것으로 생각된다.


<표 5> 집합유에 대한 체세포수 * 비교

Sample No. 체세포수 (×1,000) 상관관계(%)
(Foss/Somacount)
Foss 300 Somacount
1 22 2 11
2 55 10 55
3 99 90 110
4 194 190 102
5 202 202 100
6 212 215 98.6
7 227 254 89.4
8 239 235 101
9 274 280 97.9
10 290 254 114
11 344 331 103
12 358 384 93.2
13 415 413 100
14 427 396 107
15 429 412 104
16 437 436 100
17 483 445 108
18 530 584 90.9
19 554 618 89.7
20 781 838 93.2
21 874 954 91.6
22 1,002 1,067 93.9
23 1,012 1,082 93.4
24 2,252 1,742 129
25 2,610 1,566 167
26 2,735 2,058 132
27 7,616 4,661 163

* 체세포수 표준용액으로 보정한 후 결과치 비교


   위와같이 수의과학연구소에서 제조된 3종의 표준용액은 체세포수 검사장비에 대한 검증을 확인한 후 전국 각 시도 시험소 및 유업체 원유검사 담당자에 의해 서 체세포수 검사기기 보유기관으로 운송된다. 그리고 각 유업체 및 집유장 자체 검사원과 관할 가축위생시험소 원유검사 담당자 입회하에 기기를 표준용액으로 보정한다. 그 결과 포소매틱 90과 300, 그리고 소마카운터 기기간에 모두 95∼105% 전후의 높은 상관관계를 나타내었으며 체세포수를 보정할 수 없는 코브라에 대해서도 적용한 결과 현재 모두 표준용액과 비슷한 결과를 나타낸 것 으로 조사되었다.
   한편 일부 체세포수 검사 장비가 표준용액과 상당한 차이를 보이는 것도 있었 는데, 이는 장비의 보수 및 관리상태가 적절하지 못한것 때문인 것으로 나타났 다. 이러한 장비들의 보수후 측정한 결과는 모두 정상치를 나타내었다. 또한 유 업체 원유자체검사원의 잦은 교체로 인하여 기기의 사용 및 관리가 제대로 되지 못한 경우도 있었다.
   앞으로 이러한 부분들은 계속해서 확인 보완해야 할 것이며, 체세포 표준용액 을 이용한 정기적인 체세포 검사 결과의 일원화가 될 수 있도록 모두 최선을 다 해야 할 것으로 생각된다.